Деконтаминация (процесс уничтожения микроорганизмов в целях обеспечения инфекционной безопасности) хирургического инструментария складывается из дезинфекции, очистки и стерилизации. Инструменты после гнойных операций и перевязок, операций у больных, перенесших в течение 5 последних лет гепатит, а также при риске СПИДа обрабатываются отдельно от других. Все процедуры дезинфекции и обработки проводятся медперсоналом обязательно в перчатках из латекса достаточной толщины, халатах, масках, водонепроницаемых фартуках, защитных очках, с острыми предметами обращаются осторожно.

После использования инструменты промываются в емкости с дезинфицирующим раствором и погружаются в другую емкость с дезинфицирующим раствором так, чтобы раствор полностью покрывал инструменты. Экспозиция выдерживается в зависимости от применяемого дезинфицирующего раствора.

После обеззараживания инструменты промываются проточной водой. Очистка проводится путем погружения инструментов в специальный моющий раствор, в состав которого входит моющее средство, перекись водорода и вода. Экспозиция 15 - 20 минут при t 40 - 45 0 С. После этого инструменты моются щеткой в этом же растворе, а затем промываются в проточной и дистиллированной воде. Высушивание проводится в естественных условиях на простыне или в сухожаровом шкафу при t - 80 0 С 30 минут.

Стерилизация хирургических инструментов

Металлические хирургические не режущие инструменты стерилизуются в сухожаровом шкафу или в автоклаве. Есть инструменты одноразового использования, которые стерилизуются лучевым способом. Основным методом стерилизация режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков, но можно стерилизовать в сухожаровом шкафу. Самым лучшим методом стерилизации для них является газовая или лучевая стерилизация. Стерилизация резиновых медицинских принадлежностей (катетеры, зонды, дренажи, наконечники, перчатки) проводится путем автоклавирования при 1 атм. в течение 30 минут.

В последнее время все чаще используются одноразовые медицинские резиновые и пластмассовые принадлежности, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. Для стерилизации оптических инструментов (лапароскоп, гастроскоп и пр.) применяются газовый способ и холодная химическая стерилизация.

ЛИТЕРАТУРА

1. Барыкина Н.В., Зарянская В.Г. Сестринское дело в хирургии. Ростов н/Д: «Феникс», 2004.

2. Руководство для средних медицинских работников / Под ред. Ю.П. Никитина, В.М. Чернышева. - М.: ГЭОТАР - Медиа, 2007.

3. Осипова В.Л. Дезинфекция: учебное пособие / В.Л. Осипова. - М.: ГЭОТАР - Медиа, 2009.

4. Постановление № 9 от 13 февраля 2009 года «Об утверждении санитарно-эпидемиологических правил СП 3.1.2485-09» «Профилактика внутрибольничных инфекций в стационарах (отделениях) хирургического профиля лечебных организаций» / Главная медицинская сестра, - 2009, № 5.

Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1-2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды - стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов - 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа. Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180- 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.

Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты - 3 части, едкого натра - 15 частей, - 20 частей, дистиллированной воды - 1000 частей; формалина - 20 частей, фенола чистого жидкого - 1,5 части, карбоната натрия - 7,5 части, воды дистиллированной - 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом. стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45-50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация - суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами - в отдельной упаковке).

ü 1 этап. Дезинфекция.

Цель: Обезопасить себя от заражения инфекциями, передающимися через кровь.

Ø Инструментарий в разобранном виде помещают в накопитель с водой, где он должен находиться до момента дезинфекции.

Ø Дезинфекция проводится в другой ёмкости либо физическим методом (кипячение в дистиллированной воде 30 мин.), либо химическим (помещают в 3% хлорамин ан 30 мин. или в 4% Н 2 О 2 на 20 мин.).

Ø Промывают инструментарий проточной водой до исчезновения запаха дезинфицирующего средства.

Ø Обеззараживают накопитель (кипячение 30 мин. или засыпать на 60 мин сухой хлористой известью 200,0 на 1 л.).

ü 2 этап. Предстерилизационная очистка (ПСО).

Цель: Удаление с инструментария белковых, жировых и механических загрязнений, остатков ЛП.

Ø Погрузить инструментарий в тёплый моющий комплекс (40-50 0 С в зависимости от моющего средства) на 15 мин.

Ø Промыть щёткой, ватно-марлевым тампоном или ёршиком каждый инструмент в моющем комплексе 0,5 мин.

Ø Ополоснуть проточной водой 3-10 мин.

Ø Ополоснуть каждый инструмент дистиллированной водой 0,5 мин.

Ø Высушить горячим воздухом при t 0 80-85 0 С до полного исчезновения влаги.

Ø Провести контроль качества ПСО (см. ОСД).

ü 3 этап. Стерилизация.

Цель: Уничтожение споровых форм микробов.

Сухожаровой метод:

Ø Инструментарий разложен равно на подносе.

Ø Выдерживают 60 мин. при 180 0 С.

Ø Использовать в течение рабочей смены.

Автоклавирование:

Ø Упаковать инструментарий в х/б ткань или крепированную бумагу.

Ø Выдержать 20 мин. при 2 атм.

Химический метод:

Ø Погрузить в 1 из растворов:

v 6% Н 2 О 2 на 180 мин. при 50 0 С.

v 1% дезоксон-1 на 45 мин. при 20 0 С.

Ø Промыть в 2 стерильных ёмкостях водой по 5 мин. в каждой.

Ø Завернуть в стерильную простыню и хранить в стерильном биксе.

Ø Использовать в течение 3 сут.

Оценка результата:

Обработка операционного поля (ОП):

Последовательность действий: Подготовка ОП состоит из санитарно-гигиенической обработки кожи до операции и специальной обработки на операционном столе.

ü К плановой операции:

Ø Накануне операции провести полную санитарно-гигиеническую подготовку кожи (ванная, душ, частичная санитарная обработка с учётом состояния пациента).

Ø Смена постельного и нательного белья.

Ø В день операции обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать этиловым спиртом.

ü К экстренной операции:

Ø Провести частичную санитарную обработку кожи.

Ø Обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать спиртом.

ü На операционном столе:

Ø Широко обработать ОП двукратно от центра к периферии.

Ø Обработать ОП в месте разреза кожи.

Ø Ограничить ОП стерильным бельём.

Ø Повторить обработку ОП в месте разреза кожи.

Ø Обработать ОП перед наложением швов.

Ø Обработать ОП после наложения швов.

ü По ОСТу 42-21-2-85: 1% стодонат, 1% стодинол, 1% стодпирон, 0,5% хлоргексидинбиглюконат, АХД, АХД-2000, АХД-специаль, лизанин-ОП-Ред.

Ø Примечания:

v Если операция проводится под местным обезболиванием, то после анестезии обязательно дополнительно обработать кожу антисептиком.

v Для обработки ОП использовать окрашивающие кожу антисептики, они помогают отличить обработанные участки поля от необработанных.

v Для изоляции кожи ОП можно применить специальную стерильную пелёнку (протектор) Эмакрил.

Оценка результата: можно проверить только бактериологическим путём.

Контроль стерилизации.

ü Прямой метод:

Ø Бактериологический метод.Прямо отвечает есть ли микроб или его нет на той поверхности, которую мы проверяем. Берётся мазок, посев на п.с. Этот метод используется для контроля СЭР в лечебных учреждениях, потому что он не позволяет определить, можно ли сейчас использовать предмет (стерилен он или нет).

ü Непрямой метод:

Ø С помощью индикаторов. Меняют цвет. При закладке светлые – 120 0 С слегка песочного цвета – 132 0 С светло-коричневые – 180 0 С тёмно-коричневые (почти чёрные).

Ø С помощью химических веществ. Они запаиваются в ампулки, закладываются в бикс. При достижении нужнойt 0 вещество расплавляется и меняет цвет. Бензойная кислота при 120 0 С до стерильности серо-голубая, а после цвет сливы.Мочевина при 132 0 С до стерилизации розовая, после вишнёвого цвета. Тиомочевина, янтарная или виннокаменная кислота при 180 0 С до стерилизации белые, после жёлто-зелёные. Контрольное вещество обязательно подбирают с нужнойt 0 плавления.

Ø С помощью термо-временных индикаторов. Самоклеящаяся клеёнка, которая прикрепляется на упаковку или бикс, а после прикрепляется в журнал, где регистрируется стерилизация. ИТПС-120 – в автоклаве, до стерилизации салатовая, после чёрная. ИТПС-132 – в автоклаве, до стерилизации розовая, после фиолетово-коричневая. ИТСВ-180 – сухожаровой шкаф, до стерилизации голубая, после тёмно-серая (почти чёрная).

Надевание стерильного халата:

ü На себя. М/с д.б. в маске и колпаке, стерильный бикс д.б. на подставке, подготовленный к работе. – Подготовить руки. – Открыть крышку бикса ножной педалью, руки ниже пояса не опускать. – Проверить индикатор стерильности. – Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню, чтобы она закрывала края бикса снаружи. – Вынуть халат из бикса, взять сбоку другой рукой, не касаясь инструмента и вернуть инструмент в стерильный лоток. – Взять рукой за верхнюю часть и отпустить так, чтобы он развернулся, ничего не касаясь. – Развернуть внутренней стороной к себе. – Обе руки вдеть в рукава одновременно. – Санитарка берёт за внутреннюю сторону халата, не касаясь наружной стороны, поправляет его и завязывает тесёмки. – М/с завязывает рукава, оборачивая тесёмки вокруг запястья, кончики не заправляет за манжет халата к телу. – М/с достаёт из правого кармана пояс и подаёт его санитарке так, чтобы она смогла его завязать не касаясь рук м/с и халата. – Санитарка завязывает пояс сзади.

ü На врача. М/с д.б. в стерильном халате и перчатках. – Достаёт из бикса стерильный халат щипцами для белья. - Разворачивает его наружной стороной к себе, а внутренней к врачу так, чтобы он мог продеть обе руки в рукава. – Набросить халат на плечи. – Сзади завязывает операционная санитарка. – Врач вынимает пояс и подаёт санитарке, чтобы она не касалась руками халата. – Санитарка завязывает халат. – М/с подаёт перчатки.

Надевание стерильных печаток:

ü На себя. М/с д.б. в маске, колпаке, стерильном халате и с подготовленными руками. – Крышку бикса открыть нажатием педали, вынуть упаковку перчаток и положить на стерильный стол. – Стерильным пинцетом раскрыть упаковку, развернуть. – Левой рукой взять правую перчатку за отворот манжета с внутренней стороны. – Надеть перчатку на руку не расправляя манжеты. – 4 пальца руки в перчатки заводим под манжет левой перчатки. – Надеть перчатку. – Манжеты отвернуть на рукава халата.

Если пальцы попадают не на своё место, поправить их можно, когда обе руки в перчатках.

Перчатки снимать так , чтобы кожа не касалась загрязнённой поверхности перчаток.

ü На врача. М/с д.б. в стерильном халате и перчатках, врач д.б. в халате. – Подвести по 4 пальца под манжеты перчаток, растянуть и подать врачу так, чтобы манжеты перчаток закрывали манжеты халата. – Шариком со спиртом обработать перчатки на руках.

Виды перчаток:

ü Синтетические. - Латексные.

ü Опудренные. - Неопудренные.

ü Диагностические. - Хирургические.

ü Стерильные. - Нестерильные.

Все перчатки д.б. прочными, не обладать аллергичностью, химически стойкие, комфортные (эластичные, с хорошей чувствительностью.

Средства для дезинфекции и стерилизации:

ü Лизоформин–3000. Применяется для дезинфекции и стерилизации ИМН. ИМН погружают на 1 ч. Для дезинфекции 1,5, 0,75, 2%, для стерилизации 8%.

ü Бланизол. Для ПСО ИМН, эндоскопов 1% раствор. Можно добавлять в Лизоформин-3000, для того, чтобы усилить его свойства.

ü Дезоформ. Для дезинфекции ИМН из любого материала 1, 3, 5%.

ü Лизанол. Кожный антисептик .

ü Хлорапин. Обработка всего. В таблетках и гранулах.

ü Амидин. Кожный антисептик . Для обработки рук, ОП, мест инъекций, медицинских перчаток, обуви.

Накрытие стерильного стола для перевязочного кабинета:

Оснащение: Бикс с 5 стерильными простынями; бикс со стерильной клеёнкой; стерильный лоток с инструментарием; щипцы для белья; 2 корнцанга; 2 цапки.

Алгоритм:

ü Застелить стол стерильной клеёнкой в 1 слой в направлении от себя .

ü Ножной педалью открыть крышку бикса. Проверить индикатор. Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню.

ü Достать щипцами 1 простыню . Развернуть в 1 слой . Поверх клеёнки так, чтобы она максимально закрывала ножки стола , но не касалась пола.

ü 2 простынь в 2 слоя . Так, чтобы она свисала с края стола на 20-25 см .

ü 3 простынь в 2 слоя . Так, чтобы свисала с края стола на 10 см .

ü 4 простынь так же как 3 .

ü 5 простынь в 1 слой . Так, чтобы перекрыла край 2 простыни .

ü Корнцанги наложить на края 5 простыни на уровне углов стола.

ü Поднимаем простынь за корнцанги и складываем гармошкой на дальнем конце стола в направлении от себя к себе . Последнее направление на себя.Кладём корнцанги кольцами друг к другу.

ü Захватываем цапками 2 слоя 4 простыни и 1 слой 3 . Складываем гармошкой поверх корнцангов. Цапки кладём кольцами друг к другу .

ü На поверхность кладём всё необходимое для перевязки. Берём цапки и перекрываем . Берём корнцанги иперекрываем .

Стерилизация инструментов – первый шаг на операции. Инструменты можно стерилизовать, кипячением (основной способ), обжиганием (фламбирование) и антисептическими растворами (химическая стерилизация).
Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют их исправность. Инъекционные иглы после удаления смазки промывают эфиром или спиртом. Сложные инструменты (ножницы, иглодержатели, гемостатические пинцеты) стерилизуют полураскрытыми или в разобранном виде. Режущие и колющие инструменты обвёртывают марлей для предохранения от затупления.
Стерилизация кипячением. Для стерилизации инструментов пользуются простым стерилизатором, для подогрева которого используют любой источник тепла (примус, газовую плиту, электроплитку и т. д.), или электрическим. При отсутствии стерилизатора используют любую эмалированную посуду с крышкой.
Стерилизатор представляет собой продолговатую металлическую коробку с крышкой и вставной сеткой с ручками, за которые ее удерживают крючками при извлечении инструментов из кипящей воды.
При работе с электрическими стерилизаторами следят за исправностью проводов, штепсельной вилки и розетки, а также не допускают затекания воды в нагревательный элемент. Стерилизатор ставят на огнеупорный материал.
Для стерилизации инструментов кипячением в стерилизатор наливают необходимое количество воды и добавляют 0,25% гидроокиси натрия или 2% карбоната натрия. Указанные растворы щелочей, осаждая углекислые соли кальция и магния, предохраняют инструменты от ржавчины. Раствор доводят до кипения и через 3 – 5 мин с момента его закипания в стерилизатор погружают сетку с предварительно разложенными на ней инструментами. В холодную воду инструмент класть нельзя, так как выделяющийся при нагревании ее кислород быстро окисляет металл.
Продолжительность стерилизации инструментов 15-20 мин; время отсчитывают от момента закипания раствора после погружения в него сетки с инструментами. По истечении указанного срока сетку извлекают из стерилизатора и, как только стечет с инструментов вода, их раскладывают на стерильном инструментальном столике, тазике или оставляют в стерилизаторе, предварительно вылив из него воду.
Инструменты после операции моют щеткой в проточной воде, кипятят в 2%-ном растворе бикарбоната натрия, вытирают, слегка смазывают (только замок) вазелиновым маслом и убирают в инструментальный шкаф. Продолжительность кипячения инструментов после асептических операций 15 мин, а после гнойных – 45 мин. Инструменты, загрязненные анаэробными микробами (возбудители газовой гангрены, столбняка, некробациллеза и др.), кипятят с небольшими перерывами 2-3 раза по 30 мин.
Стеклянные приборы (шприцы, мензурки, пробирки и др.) стерилизуют отдельно от металлических инструментов в дистиллированной, дождевой или прокипяченной воде без добавления щелочей. Шприцы кипят обязательно в разобранном виде, так как они могут лопнуть вследствие разницы в коэффициенте расширения при нагревании стеклянного цилиндра и металлического поршня. Перед кипячением составные части шприца, и другие стеклянные предметы предварительно обвертывают марлей и опускают в еще не нагретую воду. Продолжительность стерилизации стеклянных предметов 15 мин. Шприцы Жанэ, кроме того, можно стерилизовать в автоклаве.
Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин пли в автоклаве.
Стерилизация обжиганием. Этим способом обычно стерилизуют крупные инструменты и эмалированную посуду. Другие инструменты стерилизуют обжиганием редко, преимущественно при неотложных операциях, когда нет времени для стерилизации кипячением. Инструменты кладут в эмалированный тазик или стерилизатор, обливают небольшим количеством (10 мл) спирта и равномерно обжигают. Стерилизация обжиганием недостаточно надежна. Кроме того, при обжигании сильно портятся инструменты, особенно режущие.
Химическая стерилизация. Для химической стерилизации инструменты погружают в один из следующих антисептических растворов: 1) жидкость Каретникова (формалин – 20 г, кислота карболовая – 3 г, натрия карбонат- 15 г, вода дистиллированная- 1000 мл) -на 30 мин; 2) 3 – 5%-ный раствор кислоты карболовой – на 30 или 60 мин; 3) раствор бактерицида 1:3000 – на 10 мин; 4) 1%-ный спиртовой раствор бриллиантового зеленого на 15 мин; 5) 0,5%-ный спиртовой раствор формалина; 6) раствор фурацилина 1:5000.
Химическая стерилизация инструментов применяется в случаях, когда по каким-либо причинам нет возможности прокипятить их или если они от кипячения портятся.
Оптические инструменты (цистоскопы, ларингоскопы и др.) стерилизуют погружением в спирт на 10 мин, а затем переносят г. раствор основной цианистой ртути (1:1000) на 15 мин. Окуляры в химические растворы погружать нельзя; их перед пользованием протирают спиртом.
Разрабатывается и испытывается методика стерилизации инструментов и перевязочных материалов ионизирующим излучением, которое обладает выраженным антимикробным действием.